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硫酸銨中常含有少量的重金屬離子,對細(xì)胞培養(yǎng)基有敏感作用,使用前必須用H2S處理:將硫酸銨配成濃溶液,通入H2S飽和,放置過夜,用濾紙除去重金屬離子,濃縮結(jié)晶,100℃烘干后使用。另外,高濃度的硫酸銨溶液一般呈酸性(PH=5.0左右),使用前也需要用氨水或硫酸調(diào)節(jié)至所需PH。
硫酸銨的加入有以下幾種方法:1)加入固體鹽法用于要求飽和度較高而不增大溶液體積的情況;2)加入飽和溶液法用于要求飽和度不高而原來溶液體積不大的情況;3)透析平衡法先將鹽析的樣品裝于透析袋中,然后浸入飽和硫酸銨中進(jìn)行透析,透析袋內(nèi)硫酸銨飽和度逐漸提高,達(dá)到設(shè)定濃度后,目的蛋白析出,停止透析。該法優(yōu)點(diǎn)在于硫酸銨濃度變化有連續(xù)性,鹽析效果好,但手續(xù)煩瑣,需不斷測量飽和度,故多用于結(jié)晶,其它情況少見。
使用固體硫酸銨時(shí):1)必須注意飽和度表中規(guī)定的溫度,一般有0℃或室溫兩種,加入固體鹽后體積的變化已考慮在表中;2)分段鹽析中,應(yīng)考慮每次分段后細(xì)胞培養(yǎng)基濃度的變化。一種蛋白質(zhì)如經(jīng)二次透析,一般來說,*次鹽析分離范圍(飽和度范圍)比較寬,第二次分離范圍較窄。3)鹽析后一般放置半小時(shí)至一小時(shí),待沉淀*后才過濾或離心。過濾多用于高濃度硫酸銨溶液,因?yàn)榇朔N情況下,硫酸銨密度較大,若用離心法需要較高離心速度和長時(shí)間的離心操作,耗時(shí)耗能。離心多用于低濃度硫酸銨溶液。
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